单位编号： 1

得分：BCL-6（6分）、CD10（9.5分）、MUM-1（6分）

问题：BCL-6、 MUM-1无信号；CD10染色太弱。

原因：从提供的检测流程中难以找到问题所在；推测可能与抗原修复不充分或染色过程中，组织干片有关。

建议：修复过程中，需保证修复液没过组织切片；适当延长修复时间或新配修复液体；染色过程中，需避免组织干片。

单位编号：2

得分：BCL-2（5分）、MUM-1（6分）

问题：BCL-2染色切片呈现生发中心细胞核着色；MUM-1染色太弱。

原因：BCL-2染色切片可能用错了抗体，很可能是染了两张BCL-6。MUM-1染色太弱从方法中看不出明显问题，因此不能排除操作过程中的细微偏差致使最后染色不佳。

建议：仔细核对抗体，严格按照操作规程工作。

单位编号：5

得分： MUM-1（9分）

问题： MUM-1染色太弱。

原因：可能因机器染色条件未达到最佳状态有关。

建议：找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。

单位编号：6

得分：BCL-6（10.5分）

问题：BCL-6染色弱，苏木素对比不清楚。

原因：推测可能机器操作的一抗孵育时间太短20分钟（20℃）。

建议：找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。

单位编号：12

得分：BCL-6（10.5分）

问题：BCL-6染色太弱，有红细胞着色，且有非特异性着色。

原因：对于BCL-6来说，一抗与二抗试剂公司不同，可能会影响染色结果。也不能排除操作过程中的细微偏差影响了染色结果。未彻底处理掉过氧化物酶。

建议：尽量使用同一公司试剂；染色过程中尽量做到细致；最好修复前用过氧化氢处理红细胞内的过氧化物酶。

单位编号：17

得分： MUM-1（7分）

问题：无信号。

原因：可能抗体失效，或染色过程遗漏，或不同公司的二抗与显色试剂不匹配。

建议：检查一抗是否失效，严格按照操作步骤进行染色，尽量使用同一公司试剂。

单位编号：28

得分：BCL-2（12分）、CD10（10分）

问题：BCL-2染色弱，苏木素复染太深； CD10染色太弱。

原因：推测可能与二抗孵育时间太短15分钟有关；CD10染色过程中使用了不同公司试剂可能会影响染色结果。

建议：二抗孵育时间可以延长至20分钟，染色过程中避免组织干片，尽量使用同一公司试剂，苏木素复染时间适当缩短或分化时间延长。

单位编号：31

得分：BCL-2（12分）

问题：BCL-2偏弱。

原因：推测可能与显色时间不足有关（1分钟）。

建议：适当延长显色时间（在显微镜下控制显色时间）。染色强度应该达到扁桃体上皮内T细胞清晰着色（即在低倍镜下能看清楚；这是国际标准）。

单位编号：32

得分：BCL-2（10分）、BCL-6（10.5分）、CD10（7.5分）

问题：BCL-2和CD10染色弱，有非特异性着色，影响判读；BCL-6染色弱。

原因：推测可能采用SP检测方法有关，染色过程应封闭内源性生物素，孵育时间可以适当延长。

建议：对于检测细胞核的试剂，建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复。最好使用二步法进行检测，可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测

方法。更换封闭内源性生物素的液体；孵育时间调整为夏日50分钟，冬日1小时。

单位编号：37

得分：BCL-6（11分）、CD10（8.5分）

问题：BCL-6和CD10染色弱。

原因：从提供的检测流程中，染色过程中使用了不同公司试剂可能影响染色结果。

建议：尽量使用同一公司试剂；对于检测细胞核的试剂，建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复。最好使用二步法进行检测，可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。染色过程中，尤其在滴加试剂时，一定要将组织上的水分甩干，以免影响抗体浓度。

单位编号：38

得分：BCL-2（8.5分）、CD10（12分）

问题：BCL-2染色弱；CD10染色太弱，影响判断。

原因：可能与机器调试有关；BCL-2稀释浓度可能偏低，需调整。

建议：找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。

单位编号：43

得分：BCL-2（9分）

问题：BCL-2非特异性着色，无法判断。

原因：：推测可能采用SP检测方法有关，染色过程应封闭内源性生物素。

建议：建议最好使用二步法进行检测，可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。更换封闭内源性生物素的液体，调整BCL-2抗体浓度，可以适当稀释。

单位编号：47

得分：BCL-6（10分）、CD10（6.5分）

问题：BCL-6和CD10染色弱，无法读取。

原因：从提供的检测流程中，推测可能与抗原修复有关。

建议：对于检测细胞核的试剂，建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复。染色过程中，尤其在滴加试剂时，一定要将组织上的水分甩干，以免影响抗体浓度。

单位编号：49

得分： CD10（11.5分）、MUM-1（8分）

问题： CD10和MUM-1染色弱。

原因：从提供的检测流程中，推测染色过程中使用了不同公司试剂可能会影响染色结果。

建议：尽量使用同一公司试剂；染色过程中，尤其在滴加试剂时，一定要将组织上的水分甩干，以免影响抗体浓度。

单位编号：52

得分： BCL-2（9分）、CD10（8分）

问题： BCL-2和CD10染色太弱。

原因：从提供的检测流程中，推测染色过程中二抗孵育时间过短以及抗原修复不足有关。

建议：高压修复时间适当调整，应为喷气后2分钟左右。适当延长二抗孵育时间，新抗体在使用前先用阳性对照进行测试，找到最佳染色浓度。

单位编号：53

得分： MUM-1（11分）

问题： 苏木素复染太深，染色对比差。评委只给了11分，很遗憾！

原因：可能与复染过程中，染色时间太长、流水冲洗不不够或分化不够有关。

建议：缩短复染时间，或延长分化时间。

单位编号：54

得分： BCL-6（12分）、CD10（7.5分）、MUM-1（10.5分）

问题： BCL-6和MUM-1染色太弱；CD10检测扁桃体组织生发中心细胞几乎无阳性。

原因：从提供的检测流程中，推测可能与一抗（40分钟）和二抗孵育时间（10分钟）过短有关。

建议：适当延长一抗孵育时间，调整为夏日50分钟，冬日1小时。二抗孵育时间也可以适当延长，可先用阳性对照进行测试，找到最佳孵育时间。

单位编号：55

得分： CD10（9分）

问题：检测扁桃体组织生发中心细胞几乎无阳性。

原因：从提供的检测流程中，未能找到影响因素，可能与抗体克隆号不同或操作过程中组织未能充分与试剂反应有关。

建议：用扁桃体组织作为阳性对照进行测试，找到最佳克隆号的试剂以及染色操作技巧，及时更换修复液体，染色过程中避免组织干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号：57

得分： BCL-2（9.5分）

问题： BCL-2染色弱，有非特异性着色。

原因：从提供的检测流程中，推测可能与一抗浓度过高有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳抗体浓度；染色过程中，每次漂洗过程一定要清洗干净，复染时需要用流水漂洗彻底。

单位编号：58

得分： CD10（12分）

问题：CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色弱。

原因：不同公司试剂或许不匹配，也可与能机器操作条件未达到最佳状态等有关。

建议：尽量使用同一个试剂公司的试剂。找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。

单位编号：59

得分： BCL-2（6分）、BCL-6（12.5分）、CD10（11.5分）

问题： BCL-2几乎无阳性信号；BCL-6和CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号不强。

原因：可与能机器操作条件未达到最佳状态等有关。

建议：找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。

单位编号：68

得分： BCL-2（11分）

问题： BCL-2染色信号不强。

原因：从提供的染色程序中并无明显异常，推测可能一抗浓度不足有关。

建议：染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号：69

得分： MUM-1（11.5分）

问题： 染色不够强。

原因：推测可能与使用不同公司试剂、机器操作等有关。

建议：适当延长一抗孵育时间，调整机器检测程序，找到最佳染色程序，并尽量使用同一试剂公司试剂。

单位编号：72

得分： CD10（10.5分）

问题： CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号不强。

原因：推测可能与使用不同公司试剂有关。

建议：尽量使用同一试剂公司试剂；染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号：73

得分： BCL-2（10.5分）、BCL-6（12分）、MUM-1（8分）

问题： BCL-2染色弱，对比差；BCL-6染色弱;MUM-1染色太弱，影响判断。

原因：推测可能抗原修复不足有关。

建议：建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复，尤其是一些核着色的抗体。染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号：74

得分： BCL-2（10分）、CD10（7.5分）

问题： BCL-2染色弱，对比差； CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号太弱。

原因：推测可能一抗孵育时间太短40分钟等有关。另外，BCL-2染色使用了不同公司试剂，或许不能完全匹配。

建议：适当延长一抗孵育时间，调整为夏日50分钟，冬日1小时。并尽量使用同一试剂公司试剂。染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号：75

得分： MUM-1（8分）

问题：染色信号不强，复染太深。

原因：推测可能机器操作程序设置时，复染程度时间过长有关。

建议：调整机器检测程序，缩短复染时间。

单位编号：76

得分： BCL-2（10.5分）、BCL-6（11.5分）、CD10（10.5分）

问题： BCL-2染色弱，对比差；BCL-6和CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。

原因：可能与一抗孵育时间太短30分钟（20℃），或采用SP检测方法有关。

建议：孵育时间调整为夏日50分钟，冬日1小时。对于检测细胞核的试剂，建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复。最好使用二步法进行检测，

可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号：79

得分： CD10（5分）

问题： CD10着色模式异常，鳞状上皮基底细胞及血管内皮细胞的核着色。

原因：可能试剂被污染、抗体用错或操作不当有关。

建议：再次用阳性切片进行试剂检测，如再次出现异常，建议更换试剂。

单位编号：80

得分： CD10（12分）

问题： CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。

原因：推测可能机器操作程序设置未达最佳状态有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。

单位编号：81

得分： BCL-2（12分）、BCL-6（10.5分）、CD10（12分）

问题： BCL-2染色弱，有非特异性着色；BCL-6和CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。

原因：BCL-2可能与试剂浓度过高有关；BCL-6和CD10可能与抗原修复不充分有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳抗体浓度；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号：84

得分： BCL-2（8分）

问题： BCL-2非特异性着色。

原因：BCL-2可能与试剂浓度过高有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳抗体浓度；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号：85

得分： BCL-2（11分）、BCL-6（12分）

问题： BCL-2染色弱，有非特异性着色；BCL-6检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。

原因：BCL-2可能与试剂浓度过高有关；BCL-6可能与抗原修复不充分有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳抗体浓度；对于检测细胞核的试剂，建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复。修复液应及时更换，染

色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。二抗孵育时间可以尝试缩短至15-20分钟。

单位编号：87

得分： BCL-2（8.5分）、BCL-6（7分）、CD10（7.5分）、MUM-1（7分）

问题： BCL-2染色弱；BCL-6、MUM-1无阳性信号；CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。

原因：可能与抗原修复不足、以及抗体孵育时间不充分有关（18-30度，变化范围太大）。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色程序；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。孵育时间调整为夏日50分钟，冬日1小时。

单位编号：88

得分： BCL-2（9.5分）、BCL-6（10分）、CD10（8.5分）

问题： BCL-2染色弱；BCL-6检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号不强；CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。

原因：操作细节不详细，可能与机器染色，程序调制有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。

单位编号：89

得分： BCL-6（10分）

问题： BCL-6检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。

原因：可能与一抗孵育时间过短有关（15分钟）以及机器染色调制有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。

单位编号：91

得分： BCL-2（11分）、BCL-6（7.5分）

问题： BCL-2染色弱，有非特异性着色；BCL-6无阳性信号。

原因：BCL-2可能与抗体浓度过高，机器调试不当有关；BCL-6可能与抗原修复不足有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。

单位编号：93

得分： BCL-2（11.5分）

问题： BCL-2染色对比差，有非特异性着色。

原因：可能与抗体浓度过高，显色时间过长有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色浓度；DAB显色时，在显微镜下调整显色时间，以免过染。

单位编号：94

得分： BCL-2（12分）

问题： BCL-2染色强度不足。

原因：提供的检测条件中，温度在18-30度，变化范围太大，无法进行分析。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色程序；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。孵育时间调整为夏日50分钟，冬日1小时，温度以27-28最佳。

单位编号：95

得分： BCL-6（8.5分）

问题： BCL-6检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱，复染不清。

原因：推测可能与采用SP检测方法有关。

建议：最好使用二步法进行检测，可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。复染时，注意漂洗干净。

单位编号：96

得分： BCL-2（8分）、BCL-6（10分）、CD10（7.5分）、MUM-1（6分）

问题： BCL-2染色过染，有非特异性着色；BCL-6、MUM-1、CD10有非特异性着色，无阳性信号。

原因：虽然从填写的注册表中未发现明显问题，但是4张切片染色均不好，很可能可能与抗原修复不足有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色浓度；修复液应及时更换，保证修复液沸腾后维持20分钟，同时染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。也可采用高压修复，应为喷气后2分钟左右。或微波炉，先用高档3分钟烧开，再换成低档维持15－20分钟。

单位编号：98

得分： BCL-6（8.5分）、CD10（8.5分）

问题： BCL-6检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。

原因：从提供的染色方法中没有找到原因，推测可能与抗原修复不足等有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色程序；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号：100

得分： BCL-2（8分）、BCL-6（7.5分）、CD10（6分）、MUM-1（6分）

问题： 染色弱，大部分区域无阳性信号。

原因：从提供的染色方法中没有找到原因，推测可能与抗原修复不足等有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色程序；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干；高压修复时间适当调整，应

为喷气后2分钟左右。或微波炉，先用高档3分钟烧开，再换成低档维持15－20分钟。

单位编号：102

得分： BCL-2（9.5分）

问题：染色过染，有非特异性着色。

原因：从提供的染色方法中没有找到原因，推测可能与抗原修复不足等有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色浓度；DAB显色时，在显微镜下调整显色时间，以免过染。

单位编号：103

得分： BCL-2（10分）

问题： 染色对比差，有非特异性着色。

原因：从提供的染色方法中没有找到原因，推测可能与抗体浓度等有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色浓度；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干；DAB显色时，在显微镜下调整显色时间，以免过染。

单位编号：106

得分： BCL-2（9分）、BCL-6（9.5分）、CD10（11.5分）、MUM-1（11.5分）

问题： BCL-2、MUM-1染色弱；BCL-6、CD10染色太弱，无法判断。

原因：可能与一抗孵育时间过短有关（28分钟），使用不同公司试剂以及机器染色调试有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。

单位编号：108

得分： BCL-2（7分）、MUM-1（11.5分）

问题： BCL-2染色弱；MUM-1染色偏弱。

原因：可能与机器染色，程序调试有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号：109

得分： CD10（10.5分）、MUM-1（10分）

问题： BCL-6、CD10染色弱。

原因：可能与机器染色，程序调试有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号：112

得分： BCL-2（10.5分）

问题：染色对比差，有非特异性着色。

原因：从提供的染色方法中没有找到原因，推测可能与抗体浓度等有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色浓度；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干；DAB显色时，在显微镜下调整显色时间，以免过染。

单位编号：115

得分： BCL-6（10.5分）

问题： BCL-6染色弱，对比差，肝脏有非特异性着色。

原因：可能与二抗孵育时间过短有关（20分钟）。

建议：适当延长二抗孵育时间，修复液应及时更换，染色过程中避免干片。

单位编号：116

得分： BCL-6（8.5分）

问题： BCL-6染色弱，DAB液体有沉淀在切片上。

原因：可能与二抗孵育时间过短有关（10分钟）。

建议：适当延长二抗孵育时间，修复液应及时更换，染色过程中避免干片。

单位编号：117

得分： BCL-2（11.5分）、CD10（7分）、MUM-1（8.5分）

问题： BCL-2、MUM-1染色弱； CD10染色太弱，无法判断。

原因：可能与机器染色，程序调试有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号：118

得分： BCL-6（12分）

问题： BCL-6染色弱。

原因：可能与机器染色调试有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。

单位编号：119

得分： BCL-2（6分）、MUM-1（8分）

问题： BCL-2无阳性信号；MUM-1染色弱。

原因：可能与使用不同公司试剂以及机器染色程序不佳等有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号：121

得分： BCL-6（7分）、CD10（12分）

问题： BCL-6无阳性信号；CD10染色偏弱。

原因：从提供的染色方法中没有找到原因，推测可能与抗体浓度等有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色浓度；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干；操作过程中，保证每一个步骤都准确。

单位编号：123

得分： BCL-6（11.5分）

问题： BCL-6染色弱。

原因：可能与使用不同公司试剂以及机器染色调试有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号：124

得分： CD10（9.5分）

问题： CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。

原因：提供的检测方法不太详细，无法分析。

建议：用阳性对照切片，调整检测方法。修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干；一抗孵育时间调整为夏日50分钟，冬日1小时。

单位编号：125

得分： CD10（7分）、MUM-1（11分）

问题： CD10染色太弱，无法判断；BCL-6染色偏弱。

原因：染色可能与修复不充分有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳检测方法；对于检测细胞核的试剂，建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复。修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。尽量使用同一公司试剂。

单位编号：128

得分： BCL-2（6.5分）、BCL-6（12分）

问题： BCL-2染色黄，非特异性着色；BCL-6染色弱。

原因：从提供的染色方法中没有找到原因，推测可能与抗体浓度等有关。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色浓度；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干；DAB显色时，在显微镜下调整显色时间，以免过染。

单位编号：132

得分： BCL-2（8分）、BCL-6（8.5分）、CD10（11.5分）、MUM-1（10.5分）

问题： BCL-2几乎无阳性信号；BCL-6、CD10、MUM-1染色弱。

原因：可能抗原修复不充分，以及使用SP检测方法，敏感性不足有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整染色程序。高压修复时间适当调整，应为喷气后2分钟左右。或微波炉，先用高档3分钟烧开，再换成低档维持15－20分钟。修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干；最好使用二步法进行检测，可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。

单位编号：134

得分： BCL-2（6分）、BCL-6（7分）、CD10（7分）、MUM-1（7分）

问题：染色太弱，无法判断。

原因：所有检测抗体染色都不理想，可能与操作程序不当有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整染色程序。高压修复时间适当调整，应为喷气后2分钟左右。或微波炉，先用高档3分钟烧开，再换成低档维持15－20分钟。修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干；最好使用二步法进行检测，可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。

单位编号：136

得分： CD10（11分）、MUM-1（12分）

问题：染色弱。

原因：可能与使用不同公司试剂以及机器染色调试有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号：137

得分： BCL-2（11.5分）

问题： BCL-2染色弱。

原因：可能与使用不同公司试剂以及机器染色调制有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号：140

得分： BCL-6（10分）

问题： BCL-6染色弱。

原因：可能与一抗孵育时间过短有关（30分钟）。

建议：用阳性对照切片，进行调整检测程序。一抗孵育时间调整为1小时。尽量使用同一公司试剂。

单位编号：142

得分： BCL-2（12分）

问题： BCL-2染色弱。

原因：从提供的染色方法中没有找到原因。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色程序；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号：143

得分： BCL-2（9.5分）、BCL-6（6分）、MUM-1（7分）

问题： BCL-2染色弱；BCL-6、MUM-1染色太弱，无法判断。

原因：可能与一抗孵育时间过短有关（30分钟）。

建议：用阳性对照切片，进行调整检测程序。一抗孵育时间调整为1小时；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号：146

得分： BCL-2（11分）

问题：染色弱，不清晰。

原因：从提供的染色方法中没有找到原因。

建议：先用阳性对照进行测试，找到最佳染色程序；修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号：148

得分： BCL-2（7.5分）、MUM-1（10分）

问题：BCL-2染色太弱，无法判断；MUM-1染色弱。

原因：可能与使用不同公司试剂以及机器染色调制有关。

建议：用阳性对照切片，进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态，并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号：149

得分： BCL-2（10.5分）、BCL-6（12分）

问题：染色弱。

原因：提供的检测方法不太详细，无法分析。

建议：用阳性对照切片，调整检测方法。修复液应及时更换，染色过程中避免干片，滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干；一抗孵育时间调整为夏日50分钟，冬日1小时。高压修复时间适当调整，应为喷气后2分钟左右。或微波炉，先用高档3分钟烧开，再换成低档维持15－20分钟。